SIEMBRA PRIMARIA DE MUESTRA DE HERIDA OPERATORIA

Describir los procedimientos de cultivo de muestra de herida para el diagnóstico bacteriológico en infecciones de herida abierta y abscesos.

Materiales y equipos

a) Estufa de 35 – 37 °C.

b) Cabina de flujo laminar o mechero Bunsen.

c) Guantes de látex.

d) Contenedor de material contaminado.

e) Medios de cultivo.

– Agar sangre de carnero (AS)

– Agar Mc Conkey (McC)

– Pueden incluirse otros medios (ejm. Manitol salado, agar Columbia CNA con 5% de sangre de carnero, etc.)

Procedimiento

a) Realizar los cultivos en una cabina de bioseguridad o cerca del mechero Bunsen.

b) Utilizar placas con medios de cultivo cuando éstas hayan alcanzado la temperatura ambiente.

c) Inoculación de la muestra:

– Muestra de aspirado purulento: Con una pipeta Pasteur inocular una gota de la muestra en un extremo de la superficie de la placa de agar de sangre de carnero, agar Mc Conkey u otros medios.

– Hisopado de secreción: Frotar rotando el hisopo sobre la superficie de los medios de cultivo tratando que toda su superficie haga contacto con el agar, empezando con el agar sangre de carnero, Mc Conkey u otros medios.

d) Esterilizar el asa de siembra en el mechero de Bunsen hasta que se ponga rojo vivo.

e) Dejar enfriar el asa.

f) Utilizando el asa de siembra y tomando como referencia central el inóculo de la muestra, realizar la siembra por dispersión agotamiento en cuatro cuadrantes de la placa con el propósito de obtener colonias aisladas.

g) Incubar las placas de AS a 35 °C por 24 horas y el agar McC en condiciones aeróbicas y por 24 horas.

h) Esterilizar el asa de siembra en el mechero.

i) Concluida la siembra, cerrar la placa y colocarla con la parte que tiene el medio de cultivo hacia arriba.

j) Incubar las placas a 35 – 37 °C por 24 – 48 horas en condiciones aeróbicas.

Lectura

A las 24 horas observar el crecimiento de colonias. Si no se observa crecimiento, seguir incubando hasta las 48 horas.

Fuente: Manual de Procedimientos Bacteriológicos en Infecciones Intrahospitalarias. MINSA-INS. 2005.

Publicado en Protocolos

Obtención de muestra de herida operatoria con hisopo

En el caso de una herida operatoria con sospecha de infección, la muestra se obtiene con hisopo.

Materiales

a) Guantes de látex estériles.

b) Solución salina estéril.

c) Jabón.

d) Gasa estéril.

e) Hisopos estériles de algodón.

f) Medio de transporte de Stuart o Amies con carbón.

g) Lámina portaobjeto.

h) Tubo estéril (opcional).

Procedimientos

a) Colocarse los guantes de látex.

b) Realizar una buena asepsia de los bordes de la herida con agua y jabón. La limpieza debe realizarse de adentro hacia fuera en forma concéntrica.

c) Retirar el exudado de la superficie enjuagando y limpiando con solución salina estéril (también se puede usar agua estéril).

d) Separar suavemente los bordes de la herida con el pulgar e índice de una mano.

e) Con la otra mano, cuidando de no tocar los bordes cutáneos adyacentes, introducir la punta del hisopo en la profundidad de la herida. Obtener la muestra rotando el hisopo y avanzando hacia fuera sin tocar el borde de la herida.

f) Obtener dos muestras:

• Una muestra para cultivo, la cual se introduce en un medio de transporte (Stuart o Amies con carbón).

• La segunda muestra se obtiene para realizar una coloración Gram. Realizar el frotis inmediatamente después de haber obtenido la muestra cuidando que éste no sea muy grueso.

g) En el medio de transporte se puede mantener la muestra a temperatura ambiente hasta 24 horas.

Fuente: Manual de Procedimientos Bacteriológicos en Infecciones Intrahospitalarias. MINSA-INS. 2005.

OBTENCIÓN DE MUESTRA DE HERIDA OPERATORIA

Describir el procedimiento de obtención de muestra de herida operatoria para el diagnóstico en el laboratorio de bacterias aeróbicas.

Muestra De Herida Operatoria Con Hisopo

Muestra De Absceso Por Aspiración Con Aguja

Fuente: Manual de Procedimientos Bacteriológicos en Infecciones Intrahospitalarias. MINSA-INS. 2005.

Publicado en Tipo de Muestras

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